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FLAER多参数检测PNH克隆的影响论文

FLAER多参数检测PNH克隆的影响论文



FLAER多参数检测PNH克隆的影响论文

  阵发性睡眠性血红蛋白尿症(PNH)是一种获得性克隆性造血干细胞疾病,其发病机制主要是由于体细胞X染色体上的PIG-A基因突变,导致血细胞膜表面糖化磷脂酰肌醇(GPI)锚合成障碍,锚连接蛋白缺失。传统的诊断方法主要有蔗糖溶血试验、酸溶血试验、尿含铁血黄素试验,但这些方法敏感性、特异性差。近些年来,通过流式细胞仪检测CD55、CD59已经成为诊断PNH的常规方法,特别是CD59,其敏感性高于CD55,在PNH 诊断过程中被认为是一个优于CD55 的指标。荧光标记的无活性嗜水气单胞菌溶素前体的变异体(FLAER)可以特异性的与GPI锚连蛋白结合,经流式细胞仪检测,其特异性和敏感性较传统方法更好。PNH、再生障碍性贫血(AA)和骨髓增生异常综合征(MDS)均为骨髓衰竭性疾病,具有相似的发病机制和临床表现,早期鉴别诊断常很困难。本文联合FLAER、CD45、CD15、CD24 多参数检测粒细胞PNH克隆以及CD59检测红细胞PNH 克隆,旨在有效提高PNH克隆检测的敏感性、特异性,有助于骨髓衰竭性疾病的早期鉴别诊断,现报道如下。

  1 资料与方法

  1.1 一般资料 所有病例均来自于本院血液科连续48例住院患者。其中PNH患者9例,AA患者13例,诊断均符合血液病诊断及疗效标准;MDS患者11例,符合2008年WHO诊断分型标准。对照组15例均为巨幼细胞性贫血患者。

  1.2 仪器与试剂 FACSAria型流式细胞仪,溶血素、磷酸盐缓冲液(PBS)和CD59、CD45、CD15、CD24试剂和均购自BD公司,FLAER试剂购自加拿大Protox Biotech公司。

  1.3 方法

  1.3.1 外周血红细胞CD59检测 取EDTA 抗凝全血100μL,经PBS洗涤后稀释于1.5mL的PBS中,取100μL加入CD59-PE单抗20μL,4℃避光孵育30min后,1 000r/min离心5min,弃上清,用2mL PBS液洗涤2遍,重悬于1mL PBS液中上机检测,用流式细胞仪测定CD59细胞的表达率。

  1.3.2 外周血粒细胞FLAER检测 取EDTA抗凝全血100μL,加入CD45、CD15、CD24、FlAER抗体各20μL,避光孵育30min后,加入2mL溶血素,室温下避光10min,溶血完全后1 000r/min离心5min,弃上清,用2mL PBS液洗涤2遍,重新悬于500μL的PBS液中液上机检测,用流式细胞仪测定FLAER的表达率。

  1.4 统计学处理 采用SPSS17.0软件进行数据分析,计量资料以x±s表示,组间比较采用t检验和Mann-Whitney U 检验,P<0.05为差异有统计学意义。

  2 结果

  2.1 临床特征 PNH患者9例,男6例、女3例,年龄16~60岁,中位年龄30岁;AA患者13例,男5例、女8例,年龄7~63岁,中位年龄38;MDS患者11例,男5例、女6例,年龄41~72岁,中位年龄53岁,其中RCMD 1例,RCUD 6例,RAEB-Ⅰ2例RAEB-Ⅱ1例,5q-综合征1例;对照组15例,男6例、女9例,年龄19~61岁,中位年龄34岁。

  2.2 不同方法对PNH 患者检测的比较 PNH 组患者FLAER缺失率和CD59缺失率分别为(70.07±28.77)%和(38.51±29.15)%,显著高于对照组、AA组、MDS组,差异有统计学意义(P<0.05)。FLAER检测结果明显高于CD59检测,差异有统计学意义(P<0.05)。其中,有2例患者,一例CD59缺失率为7.8%,FLAER缺失率为88.1%;另一例CD59缺失率为5.5%,FLAER缺失率为23.2%。

  2.3 不同方法对非PNH 患者检测的比较 各组中FLAER缺失率平均值均大于CD59缺失率,但差异无统计学意义(P>0.05),表明在非PNH组中FLAER和CD59检测无显著差异。对照组中FLAER缺失率为0.0%,特异性100%,有3例存在CD59缺失,缺失率均小于1%。13例AA 患者中5例检测出FLAER缺失,其中4例检测出CD59缺失,1例未检测出;11例MDS患者中3例检测出FLAER缺失,其中2例存在CD59缺失,1例CD59缺失率为0。结果说明FLAER检测比CD59检测更为敏感,特异性更好。

  3 讨论

  到目前为止,已经发现了20多种蛋白在PNH 患者血细胞表面表达缺乏,其中红细胞膜上衰变加速因子(CD55)和反应性溶血膜抑制物(CD59)的缺失被认为是引起PNH 病理生理的主要原因。红细胞数目多、抗体表达强是灵敏度检测最好的目标细胞。尤其是在一些粒细胞减少的疾病中如AA、MDS,红细胞检测尤为重要。同时,通过比较红细胞和白细胞的数值,可以给临床提供更多信息。CD55分子在红细胞上表达较低,而CD59分子的荧光染色强且均一,近些年来已成为PNH诊断的“金标准”。然而,越来越多的研究发现检测红细胞CD59表达对PNH 的诊断有一定的局限性。

  本研究发现,在PNH组的两例患者中,一例CD59缺失率为5.5%,另一例CD59缺失率为2.9%,而FLAER缺失率分别为23.2%和47.7%。可能是由于患者正处于疾病的活动期,接受输血治疗,影响了红细胞CD59的表达,导致CD59表达出现假阳性。有研究表明,在小细胞低色素性贫血时,病人的红细胞膜表面的CD59表达均有降低,但粒细胞是正常的,若只检测红细胞的CD59会造成其表达假阴性。此外,正常细胞衰老时表面分子CD59还有可能自发丢失,均可导致检测值偏离事实。随着技术不断进步,人们研究出了FLAER 技术,FLAER是Alexa-488标记的无活性的嗜水气单胞菌溶素前体的变异体,可以特异性地与GPI锚链蛋白结合,在所有具有GPI锚连蛋白的粒细胞上均有特异性表达,不会因不同细胞表达GPI锚链蛋白的多少和种类不同造成误差。由于FLAER能直接检测GPI蛋白,有助于识别真正的PNH 和免疫性血细胞减少症,明确真正的GPI阴性细胞。本研究中对照组FLAER检测缺失率均为0,与CD59相比检验结果更具有特异性;在PNH组中,FLAER的缺失率显著高于CD59,敏感性更高。FLAER也是防止门内出现污染细胞最好的抗体。如果门内污染了少量的.CD24阴性表达的细胞群,可能会被误认为是小的PNH 克隆,而FLAER 与CD24一起使用可以提高PNH检测的准确性,CD24/FLAER双阴性细胞群才是真正PNH克隆细胞群。FLAER多参数检测要求外周血标本采集后必需及时送检,否则会导致粒细胞存活率下降,细胞非特异性染色增强,影响检测效果。这在一定程度上影响了FLAER在临床上的应用。PNH 克隆的检出对于MDS和AA的临床表现、治疗及转归有重要意义。部分具有PNH 克隆的AA患者对免疫治疗效果更好,即使小于0.1%的克隆也会影响治疗效果。

  对于检测出少量PNH克隆的AA患者,需监测PNH克隆数的变化,因为患者有可能发展为溶血性贫血。在本研究中,PNH 与MDS的关系只局限在低危MDS中,表现为血细胞减少,骨髓增生低下;遗传学异常发生率低,临床过程惰性进展,更多地表现为骨髓衰竭的特点。AA 组、MDS 组中FLAER的缺失率均大于CD59的缺失率。由于AA和低增生性MDS的鉴别十分困难,但到目前为止还没有报道MDS的患者进展为PNH,监测PNH 克隆对于这两种疾病的鉴别具有一定的意义。AA、MDS患者中检测出的PNH 克隆常常很小,CD59检测不易测出。在这两组中各有1例患者CD59缺失率为0,而FLAER表达均有缺失,缺失率分别为4.2%、2.9%。FLAER检测更敏感,与CD59相比灵敏度更高。由于AA、低增生性MDS和PNH 均属于骨髓衰竭性疾病,具有相似的发病机制、临床表现和生物学特性,三种疾病之间的鉴别很困难。FLAER检测与CD59相比灵敏性和特异性更高。能够早期提供更为灵敏、特异的PNH 克隆依据,在临床症状不典型、诊断不明确的疑似PNH患者,辅以FLAER检测有助于早期确诊或除外诊断。因此,FLAER高灵敏度检测PNH 克隆对这三种疾病及疾病之间的诊断鉴别及了解临床过程、预后及转归具有一定的意义。

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